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FL3500/LC葉夾式葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x
FL3500/LC葉夾式葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x

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北京易科泰生態(tài)技術(shù)有限公司

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FL3500/LC葉夾式葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x

FL3500葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x是專門用于對(duì)藍(lán)綠藻或綠藻等微藻,葉綠體或類囊體懸浮物,乃至葉片進(jìn)行光合作用研究的強(qiáng)大科研工具。儀器具備雙通道測(cè)量控制,可控制測(cè)量樣品的溫度,并配備單翻轉(zhuǎn)光(STF),內(nèi)置多種可用戶自行修改的測(cè)量程序,可進(jìn)行目前國(guó)際上對(duì)于葉綠素?zé)晒獾母鞣N深入機(jī)理研究。

FL3500/LC葉夾式葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x配備專用的葉夾式測(cè)量單元,測(cè)量區(qū)域直徑為12.7mm(0.5 inch)。葉夾式測(cè)量單元可以無(wú)損地夾持葉片進(jìn)行測(cè)量,而且不會(huì)使葉片脫離其原來(lái)的微環(huán)境。全部所需的光源與檢測(cè)器都內(nèi)置在測(cè)量單元進(jìn)行直接測(cè)量,避免了一般的熒光儀使用光纖造成檢測(cè)光信號(hào)的衰減。

應(yīng)用領(lǐng)域:

· 植物光合特性和代謝紊亂篩選

· 生物和非生物脅迫的檢測(cè)

· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

· 代謝混亂研究

· 光合系統(tǒng)工作機(jī)理研究

· 受脅迫植物光合生理應(yīng)對(duì)策略研究

功能特點(diǎn):

· 具備雙通道測(cè)量控制,可以與各種測(cè)量單元如標(biāo)準(zhǔn)版、快速版、葉夾式及水下測(cè)量頭等配合使用,各版本的測(cè)量頭可互換使用

· 內(nèi)置多種可用戶自行修改的測(cè)量程序,涵蓋目前國(guó)際上對(duì)于葉綠素?zé)晒獾母鞣N一般性研究和深入機(jī)理研究

· 配備葉夾式探頭,可快速簡(jiǎn)便地測(cè)量各種葉片的葉綠素?zé)晒鈪?shù)

技術(shù)參數(shù):

· 實(shí)驗(yàn)程序:葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)測(cè)量;PAM(脈沖調(diào)制)測(cè)量;OJIP快速熒光動(dòng)力學(xué)測(cè)量;QA再氧化動(dòng)力學(xué);S狀態(tài)轉(zhuǎn)換;葉綠素?zé)晒獯銣?/span>

  • 熒光參數(shù):F0,FmFv,F0Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSIIFv/Fm,Fv’/Fm’Rfd,qN,qP,ETR50多項(xiàng)葉綠素?zé)晒鈪?shù)與圖像;OJIP曲線與F0FJ、Fi、Fm、FvVJ、ViFm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SMSS、NPhi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_PavABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC20多項(xiàng)相關(guān)參數(shù)

· 時(shí)間分辨率(采樣頻率):高靈敏度檢測(cè)器,時(shí)間分辨率達(dá)4μs

· 控制單元:雙通道通用高度精確性自動(dòng)微處理器,可以與各種測(cè)量單元如標(biāo)準(zhǔn)版、快速版、葉夾式及水下測(cè)量頭等配合使用(無(wú)需另行購(gòu)買控制單元)

· 測(cè)量光閃:標(biāo)準(zhǔn)為波長(zhǎng)617nm的橙光或455nm的藍(lán)光,光閃時(shí)間25μs

· 單翻轉(zhuǎn)飽和光閃:標(biāo)準(zhǔn)光源為630nm的紅光,光閃時(shí)間2050μs

· 持續(xù)光化學(xué)光:標(biāo)準(zhǔn)為630nm的紅光,**光強(qiáng)1500 μmol(photons)/m2.s;

· 每組lED光源強(qiáng)度和時(shí)間可通關(guān)軟件調(diào)控,同時(shí)光源可根據(jù)研究要求選配

· 測(cè)量面積:直徑為12.7mm(0.5 inch)

· FluorWin軟件:定義或創(chuàng)建實(shí)驗(yàn)方案、光源控制設(shè)置、數(shù)據(jù)輸出、分析處理和圖表顯示

產(chǎn)地:捷克

參考文獻(xiàn):

§ Functioning of the Bidirectional Hydrogenase in Different Unicellular Cyanobacteria, é Kiss, et al, 2013. Research for Food, Fuel and the Future

§ Excess Ca2+does not alleviate but increases the toxicity of Hg2+ to photosystem II in Synechocystis sp.(Cyanophyta), D Zhang, et al, 2013. Ecotoxicology and environmental safety

§ Inhibition of the Water Oxidizing Complex of Photosystem II and the Reoxidation of the Quinone Acceptor QA? by Pb2+, A Belatik, et al, 2013. PloS one

§ Destabilization of the Oxygen Evolving Complex of Photosystem II by Al3+, I Hasni, et al, 2013. Photochemistry and Photobiology

§ Effects of Sb (V) on growth and chlorophyll fluorescence of Microcystis aeruginosa (FACHB–905),S Wang, et al, 2012. Current Microbiology

§ Correlations between the temperature dependence of chlorophyll fluorescence and the fluidity of thylakoid membranes, A Tovuu, et al, 2012. Physiologia Plantarum

§ Developmental Defects in Mutants of the PsbP Domain Protein5 inArabidopsis thaliana. JL Roose, et al, 2011. PloS one

§ Inhibition of photosystems I and II activities in salt stress–exposed Fenugreek (Trigonella foenum graecum). M Zaghdoudi, et al, 2011. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology

§ Productivity correlated to photobiochemical performance of Chlorella mass cultures grown outdoors in thin–layer cascades. J Masojídek, et al, 2011. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology

§ Binding Stoichiometry and Affinity of the Manganese–Stabilizing Protein Affects Redox Reactions on the Oxidizing Side of Photosystem II. JL Roose, et al, 2011. Biochemistry

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