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TL6000植物熱釋光測(cè)量系統(tǒng)
TL6000植物熱釋光測(cè)量系統(tǒng)

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捷克

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北京易科泰生態(tài)技術(shù)有限公司

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熱釋光(Thermoluminescence,縮寫TL)是晶體受到輻射照射后,產(chǎn)生了自由電子。這些電子被晶格缺陷俘獲而積攢起來(lái),在加熱過程中以光形式釋放出來(lái)。葉綠素?zé)後尮鈩t是由于活化能壘在生理溫度下限制了諸如電子再結(jié)合等暗反應(yīng),因此光化學(xué)反應(yīng)中分離的電子對(duì)穩(wěn)定存在于電子載體中。在熱刺激下, S2QA-,S2QB- S3QB-電子對(duì)的再結(jié)合,使PSII中激發(fā)的單線態(tài)葉綠素分子發(fā)出熱釋光。然后,逐漸升高溫度會(huì)增加再結(jié)合的比率,從而激發(fā)不同類型的電子對(duì)形成TL譜帶。葉綠素?zé)後尮饽軌蚪沂?/span>光合放氧復(fù)合物(OEC)穩(wěn)定性及PSII總體完整性、QB受體損傷及葉綠體內(nèi)腔 pH值變化等光系統(tǒng) II的深層運(yùn)轉(zhuǎn)機(jī)理。

TL植物熱釋光測(cè)量系統(tǒng)是目前**商用化的葉綠素?zé)後尮鉁y(cè)量?jī)x器,針對(duì)研究PSII能量水平結(jié)構(gòu)進(jìn)行了專門設(shè)計(jì)。PSII反應(yīng)中心光誘導(dǎo)電荷分離導(dǎo)致儲(chǔ)存了吸收光能的激發(fā)電子對(duì)的累積。加熱誘導(dǎo)這些激發(fā)電子對(duì)的重組,從而引發(fā)光釋放,并在一定溫度范圍內(nèi)形成特異性熱釋光曲線。根據(jù)不同釋光曲線的形狀、峰位和峰值,可以研究分析關(guān)于特定激發(fā)電子對(duì)的能量穩(wěn)定性及PSII反應(yīng)中心功能等。TL6000為這一系統(tǒng)的**型號(hào),**測(cè)量范圍為-100°C+200°C,使用范圍更寬,可以對(duì)低溫、高溫段熱釋光進(jìn)行研究。

應(yīng)用領(lǐng)域

1、 無(wú)損傷測(cè)量PSII電子傳遞

2、 PSII對(duì)生物/非生物脅迫與結(jié)構(gòu)修飾的適應(yīng)和應(yīng)答

3、 脅迫條件下葉綠體內(nèi)能量不平衡的敏感性檢測(cè)

4、 類囊體膜PSII氧化還原反應(yīng)

5、 基于峰值溫度轉(zhuǎn)換,對(duì)供體側(cè)與受體側(cè)的氧化還原電位變化進(jìn)行解釋

6、 通過測(cè)量熱釋光震蕩模式,指示S狀態(tài)轉(zhuǎn)換和放氧復(fù)合體狀態(tài)

典型樣品

植物碎片

各種微藻

葉綠體懸浮液

類囊體懸浮液

工作原理

熱釋光(Thermoluminescence,縮寫TL)是晶體受到輻射照射后,會(huì)產(chǎn)生自由電子,這些電子被晶格缺陷俘獲而積攢起來(lái),在加熱過程中以光形式釋放出來(lái)。其基本的實(shí)驗(yàn)過程是將葉片快速冷凍到某一溫度,之后給葉片一個(gè)足夠強(qiáng),但時(shí)間盡量短(一般<5μs)的單反轉(zhuǎn)光(single turn-over?ash),用于誘導(dǎo)每個(gè)PSII反應(yīng)中心發(fā)生僅一次的電荷分離;然后逐漸升溫,同時(shí)測(cè)量葉片放出的熱釋光,繪制TL譜帶。

TL植物光合熱釋光測(cè)量系統(tǒng)使用能量足夠強(qiáng)的LED光源,所釋放5-10μs的方波脈沖能夠飽和所有的PSII反應(yīng)中心,其溫度控制單元可以在降溫后,再使樣品的溫度以0.1/sec1.5/sec的速率線性增加。不同的閃光序列及樣品處理能夠使樣品處于不同的能量狀態(tài),不同的溫度下釋放的光能源自光合機(jī)構(gòu)的不同結(jié)構(gòu)。分析釋光曲線的形狀、峰位和峰值,可以研究分析關(guān)于特定激發(fā)電子對(duì)的能量穩(wěn)定性及PSII反應(yīng)中心功能等。

熱釋光(TL)譜帶的來(lái)源及意義

不同型號(hào)的控溫方式與范圍

具體型號(hào)

控溫方式

控溫范圍

TL 6000/ST標(biāo)準(zhǔn)版

Peltier控溫器+水冷單元

-25℃到+70

TL 6000/ET溫度擴(kuò)展版

電阻加熱器+液氮制冷單元

-100℃到+200

系統(tǒng)組成

TL系列植物光合熱釋光測(cè)量系統(tǒng)3部分組成:主控制分析單元、外部制冷單元測(cè)量室。

主控制分析單元:根據(jù)用戶定義方案或軟件內(nèi)置的實(shí)驗(yàn)程序來(lái)執(zhí)行實(shí)驗(yàn)過程并采集數(shù)據(jù)。彩色顯示屏可實(shí)時(shí)顯示測(cè)量曲線。

外部制冷單元

水冷單元TL 6000/ST標(biāo)準(zhǔn)版配備:包含一個(gè)電子控制的抽水泵和內(nèi)部?jī)?chǔ)水的制冷器,用于測(cè)量室降溫。

液氮制冷單元(TL 6000/ET溫度擴(kuò)展版配備):將液氮罐通過管路連接到測(cè)量室,通過電子控制的低溫輸出閥可以將測(cè)量室溫度控制到*低-100。同時(shí)也用于測(cè)量結(jié)束后給測(cè)量室降溫。

測(cè)量室:包括四個(gè)關(guān)鍵組成部分:光源、光電倍增管傳感器、溫度控制器、樣品盤。

技術(shù)參數(shù)

· 溫度范圍:

TL 6000/ST標(biāo)準(zhǔn)版-25℃到+70

TL 6000/ET溫度擴(kuò)展版:-100℃到+200℃

· 控溫模式:線性升溫

· **線性升溫速度:TL 6000/ST標(biāo)準(zhǔn)版1.5oC/sec,TL 6000/ET溫度擴(kuò)展版1.8oC/sec

· 溫度調(diào)控方式:TL 6000/ST標(biāo)準(zhǔn)版:Peltier控溫器+水冷單元;TL 6000/ET溫度擴(kuò)展版:電阻加熱器+液氮制冷單元

· *小采樣周期:100ms

· 過熱保護(hù):提供

· 環(huán)境光保護(hù):提供

· 控制模式:手動(dòng)(恒溫);程序設(shè)定溫度曲線

· 樣品盤:鍍金銅盤,TL 6000/ST標(biāo)準(zhǔn)版直徑14mm,TL 6000/ET溫度擴(kuò)展版直徑22mm

· 測(cè)量樣品:藻類、藍(lán)藻、葉綠體懸浮液,葉片等

· 單反轉(zhuǎn)飽和脈沖:波長(zhǎng)lmax=627nm,**光強(qiáng)250000μmol(photons).m-2.s-1

· 光化光:波長(zhǎng)lmax=627nm,**光強(qiáng)2000μmol(photons). m-2.s-1

· 探測(cè)傳感器通過軟件靈敏控制的光電倍增管

· 光譜響應(yīng):300nm-900nm

· 接通延遲:100ms

· 控制:用戶可通過專用編程語(yǔ)言自定義程序控制儀器測(cè)量過程

· 通訊:RS232串口/USB

· 軟件:FluorWin 3.7

· 電源90V-240V

操作軟件與實(shí)驗(yàn)結(jié)果

典型應(yīng)用

中科院植物所盧從明研究員是國(guó)內(nèi)*早將TL熱釋光技術(shù)用于植物光合研究的科學(xué)家之一,其領(lǐng)導(dǎo)的團(tuán)隊(duì)也一直位于這一研究的國(guó)際*前沿。上圖即為2016年發(fā)表的文獻(xiàn),通過測(cè)量施加DCMU和不同光照條件的葉綠素?zé)後尮馇€,評(píng)估谷胱甘肽還原酶2對(duì)擬南芥PSII維持功能的作用(Ding2016)。

產(chǎn)地:歐洲

參考文獻(xiàn):

OHP1, OHP2, and HCF244 form a transient functional complex with the photosystem II reaction center, Y Li,et al, 2019.Plant Physiology179,195–208

Antimycin A inhibits cytochrome b559-mediated cyclic electron flow within photosystem IID Takagi,et al, 2019.Photosynthesis Research139(1–3), 487–498

'Birth defects' of photosystem II make it highly susceptible to photodamage during chloroplast biogenesis, D Shevela,et al, 2019.Physiologia Plantarum 166, 165–180

High light acclimation of Chromera velia points to photoprotective NPQ, E Belgio, et al, 2018.Photosynthesis Research135(1–3), 263–274

Comparison of photosynthetic performances of marine picocyanobacteria with different configurations of the oxygen-evolving complex, F Partensky,et al, 2018.Photosynthesis Research138(1), 57–71

Diel regulation of photosynthetic activity in the oceanic unicellular diazotrophic cyanobacterium Crocosphaera watsonii WH8501, T Masuda, et al, 2018.Environmental Microbiology20(2), 546–560

Glutathione reductase 2 maintains the function of photosystem II in Arabidopsis under excess light, S Ding, et al, 2016. Biochimica et BiophysicaActa (BBA) – Bioenergetics1857(6), 665–677

Titanium dioxide nanoparticles (100–1000 mg/l) can affect vitamin E response in Arabidopsis thaliana, R Szymańska, et al, 2016. Environmental Pollution 213, 957–965

The N-terminal sequence of the extrinsic PsbP protein modulates the redox potential of Cyt b559 in photosystem II, T Nishimura, et al, 2016.Sci Rep. 6, 21490.

The PsbY protein of Arabidopsis Photosystem II is important for the redox control of Cytochrome b 559, L von Sydow, et al, 2016. Biochimica et BiophysicaActa (BBA) – Bioenergetics1857 (9),1524–1533

Herbicidal effects of harmaline from Peganumharmala on photosynthesis of Chlorella pyrenoidosa: Probed by chlorophyll fluorescence and thermoluminescence, C Deng, et al, 2014. Pesticide Biochemistry and Physiology115, 23–31

Characterization of photosystem I in rice (Oryza sativa L.) seedlings upon exposure to random positioning machine, B Chen, et al, 2013. Photosynthesis Research116(1), 93–105

Isochorismate synthase 1 is required for thylakoid organization, optimal plastoquinone redox status, and state transitions in Arabidopsis thaliana, P Gawroński, et al, 2013.Journal of Experimental Botany

Enhanced sensitivity and characterization of photosystem II in transgenic tobacco plants with decreased chloroplast glutathione reductase under chilling stress, Ding, et al, 2012. Biochimica et BiophysicaActa (BBA) – Bioenergetics1817(11), 1979–1991

Thermoluminescence. PV Sane, et al, 2012. Photosynthesis

Analysis of S2QA-charge recombination with the Arrhenius, Eyring and Marcus theories. S Rantam?ki, et al, 2011. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology

Manganese limitation induces changes in the activity and in the organization of photosynthetic complexes in the cyanobacterium Synechocystis sp. strain PCC 6803. E Salomon, et al, 2011. Plant physiology

Inhibition of photosynthetic oxygen evolution and electron transfer from the quinone acceptor QA? to QB by iron deficiency. N Msilini, et al, 2011. Photosynthesis research

Chlorophyll fluorescence emission as a reporter on cold tolerance in Arabidopsis thaliana accessions. A Mishra, et al. Plant Signaling &Behavior, 2011

Characterization of photosystem II in transgenic tobacco plants with decreased iron superoxide dismutase. Y Zhang, et al, 2011. Biochimica et BiophysicaActa

Two functional sites of phosphatidylglycerol for regulation of reaction of plastoquinone QB in photosystem II. S Itoh, et al, 2011. Biochimica et BiophysicaActa

Binding Stoichiometry and Affinity of the Manganese-Stabilizing Protein Affects Redox Reactions on the Oxidizing Side of Photosystem II. JL Roose, et al, 2011. Biochemistry

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